![Carte des chèvreries[1].JPG](kouaclip_image002.jpg) |
| Figure 1. Cartographie des chèvreries sélectionnées pour la campagne d’IA dans la région de Fatick. |
| Livestock Research for Rural Development 26 (3) 2014 | Guide for preparation of papers | LRRD Newsletter | Citation of this paper |
Cette étude avait pour principal objectif d’étudier les paramètres protéiques et enzymatiques chez les chèvres inséminées à l’œstrus induit. Ainsi, 272 chèvres sahéliennes ont été sélectionnées et reparties en quatorze (14) chèvreries traditionnelles dans la région de Fatick au Sénégal. Le protocole d’induction de l’œstrus a consisté à la pose du dispositif intravaginal de Cronolone contenant 45mg d’acétate de fluorogestone (FGA) laissé en place pendant 11 jours en Novembre. Une injection IM d’Estrumate (50 µg de cloprosténol, analogue de synthèse de la PGF2α) et de 500IU d’eCG (Gonadotropine sérique équine) lyophilisée a été effectuée 2 jours avant le retrait de l’éponge. Toutes les chèvres ont été inséminées 45 ± 3 heures après ce retrait avec des semences importées de chèvres de race Alpine. Les prélèvements sanguins ont été réalisés à J0 (Jour d’IA). L’analyse des sérums a consisté à doser les paramètres protéiques (protéines totales, albumines, globulines et urée) et les transaminases : aspartate aminotransférase (ASAT) et alanine aminotransférase (ALAT).
Les taux d’induction d’œstrus et de gravidité 40 jours après IA ont été de 83,5% et 65,2% respectivement. L’urémie et l’albuminémie ont été différents chez les gravides et non gravides. La globulinémie totale a été élevée indépendamment du statut physiologique de la chèvre inséminée. L’analyse des différentes fractions des protéines totales à J0 après électrophorèse a révélée une proportion de gammaglobulines élevée soit 33,44±5,08% et 34,51±6,89% respectivement chez les gravides et non gravides. L’ALAT est restée à un taux physiologique tandis que l’ASAT a été élevée aussi bien chez les gravides que les non gravides. Les résultats confirment l’hypothèse du lien entre la nutrition protéique et la fertilité à l’œstrus induit.
Mots-clés: caprin, FGA, fertilité, IA, nutrition, Sénégal, induction de l’œstrus
This research aimed to study the proteinic and enzymatic parameters of inseminated caprine following estrus induction. Thus, 272 sahelian goats were selected and distributed in fourteen (14) traditional goat homes in the area of Fatick in Senegal. The protocol of estrus induction consisted of the installation of Cronolone in vagina containing 45mg of acetate fluorogestone (FGA) during 11 days in November. An intramuscular injection of Estrumate (50 µg of cloprostenol, analogist of PGF2α) and 500IU of eCG (equine chorionic gonadotropin) freeze-dried was carried out 2 days before the sponge removal. All the goats were inseminated 45 ± 3 hours after withdrawal with imported semens of Alpine race from France and the blood was carried out at day 0 (Day of AI). The analysis of the sample consisted in proportioning the proteinic parameters (total proteins, albumins, globulins and urea) and transaminases: aspartate aminotransferase (ASAT) and alanine aminotransferase (ALAT).
The rates of estrus induction and pregnancy 40 days post AI were 83.5% and 65.2% respectively. Ureamia and albuminemia were different between the pregnant and the nonpregnant. The total globulins were higher independently of the physiological statute of the inseminated goat. The analysis of the various fractions of total proteins at day 0after electrophoresis revealed a high proportion of gammaglobulins: 33.44±5,08 % and 34.51±6,89 % for pregnant and non pregnant respectively. The ALAT remained physiological while the ASAT was high in the both groups. The results confirm the bond between the proteinic nutrition and the fertility following estrus induction.
Key words: AI, caprine, FGA, fertility, nutrition, Senegal, estrus induction
L’élevage constitue une composante essentielle de l’économie sénégalaise. Cette activité occupe 56% (Faye et Alary 2001) des ménages et constitue une source de protéines et de revenus pour les populations pauvres surtout en milieu rural. En 2004, le cheptel des ruminants était estimé à 3,039 millions de bovins et 8,764 millions de têtes de petits ruminants dont 4,739 millions d’ovins et 4,025 millions de caprins (FAO 2008). En élevage caprin, la chèvre du Sahel est la plus utilisée au Sénégal. Elle est élevée pour la production laitière et surtout de viande. Mais l’obtention de bonnes performances de production en élevage caprin ne peut se faire sans l’utilisation de biotechnologies.
Dans l’optique de diversification des ressources génétiques animales, le gouvernement du Sénégal en partenariat avec la région Poitou Charentes en France a lancé un programme d’insémination artificielle caprine dans la région de Fatick avec pour objectif prioritaire de lutter contre la pauvreté notamment en milieu rural. L’analyse des résultats de l’insémination artificielle depuis le début de cette campagne en 2005 a montré une faiblesse des taux de fertilité (31%) (Djakba, 2007). Outre les facteurs technico-économiques, l’alimentation pourrait également expliquer ce faible taux. En effet, un excès de protéines alimentaires peut être un des facteurs car le producteur a souvent tendance à apporter une alimentation riche en protéines pour maximiser la productivité des animaux. Un tel excès accroit les teneurs en urée du plasma et du lait (Froidmont et al 2002). C’est dans ce contexte que s’est déroulée cette étude avec pour objectif général d’étudier les paramètres protéiques et enzymatiques chez les chèvres inséminées à l’œstrus induit à base de Cronolone. De façon spécifique, il s’agira de (i) déterminer les taux d’induction de l’œstrus et de gravidité (ii) évaluer l’état protéique des chèvres inséminées en fonction de leur statut physiologique (iii) évaluer l’état enzymatique (ASAT et ALAT) des chèvres inséminées en fonction de leur statut physiologique.
L’étude s’est déroulée dans la région de Fatick limitée par la région de Kaolack à l’est, la région de Thiès au nord-ouest, l’océan atlantique à l’ouest, la République de Gambie au sud et les régions de Thiès, Diourbel et de Louga au nord et nord-ouest. Elle comprend 3 départements : Fatick, chef lieu de la région, Foundiougne et Gossas. Les critères de sélection des chèvres étaient: chèvre multipare, non gravide, ne présentant aucun antécédent pathologique (surtout les avortements et les dystocies), avec un bon état corporel (≥2) et une bonne conformation générale. Les animaux retenus pour l’étude étaient de race sahélienne, âgés de 3,4±1,6 ans en moyenne avec un poids moyen de 20,8±4,3 kg et une NEC de 2,2±0,2. Au total, sur un groupe de 371 chèvres présélectionnées, seules 272 ont été retenues pour le programme d’IA caprine. L’étude à été conduite juste après l’hivernage, dès novembre, période fraîche et optimale de reproduction corrélée à un disponible fourrager.
Les chèvres sélectionnées ont été réparties en 14 chèvreries sur l’ensemble de la région de Fatick (Figure 1 ; photo 1). Les chèvreries ont été gérées par les coopératives organisées d’éleveurs, constituées uniquement des femmes (Photo 2). Les animaux étaient conduits aux pâturages très tôt le matin, puis revenaient dans les chèvreries vers 11h-13h pour ensuite y retourner l’après midi jusque dans la soirée. Pendant leur stabulation, elles ont reçu de la paille de brousse, de la paille de niébé, paille de maïs, de la fane d'arachide plus de l’aliment bétail (NMA SANDERS).
|
| Figure 1. Cartographie des chèvreries sélectionnées pour la campagne d’IA dans la région de Fatick. |
 |
 |
| Photo 1: Chèvrerie de Colobane | Photo 2: Comité de gestion de la chèvrerie de Ndiéné Lagane avec l’équipe de recherche |
Un mois avant le début des traitements d’induction de l’œstrus, toutes les chèvres sélectionnées ont été déparasitées (ivermectine) et vaccinées contre la pasteurellose. Le protocole d’induction de l’œstrus a consisté à la pose du dispositif intravaginal (éponge) de Cronolone contenant 45mg d’acétate de fluorogestone (FGA) laissé en place pendant 11 jours. Une injection IM d’Estrumate (50 µg de cloprosténol, analogue de synthèse de la PGF2α) et de 500IU d’eCG (Gonadotropine sérique équine) lyophilisée a été effectuée 2 jours avant le retrait de l’éponge. Toutes les chèvres ont été inséminées 45 ± 3 heures après la détection des chaleurs avec des semences importées de chèvres de race Alpine à haut potentiel génétique. Les chaleurs ont été détectées au moins 3 fois par jour, tôt le matin, vers midi et vers 18 heures.
Le jour de l’insémination, un prélèvement sanguin a été réalisé sur toutes les vaches de l’étude par ponction de la veine jugulaire ou de la veine caudale. Le sang a été collecté dans les tubes secs stériles sous vide (VenojectND) portant le nom ou numéro de l’animal. Après coagulation à 4°C pendant 8 heures, les échantillons sanguins ont été centrifugés (1500 g, 10 minutes, 4°C) et les sérums recueillis ont été conservés à -20°C jusqu’au jour de l’analyse.
Les analyses ont été effectuées au laboratoire de biochimie et d’endocrinologie de l’Ecole Inter-Etats des Sciences et de Médecine Vétérinaire (EISMV) de Dakar. Il s’agissait de réaliser des dosages colorimétriques permettant d’évaluer le statut nutritionnel des vaches et de déterminer les concentrations de chaque paramètre dans le sang à J0. Les kits utilisés dans l’ensemble des dosages provenaient du laboratoire Biosystems (lot 308AA pour l’urée, lot 145AA pour l’ASAT et lot 04052 pour l’ALAT) et les densités optiques ont été lues à l’aide d’un spectrophotomètre d’absorption UV Biosystems BTS-310. Les méthodes de dosage variaient selon chaque paramètre :
- Urée : méthode à l’uréase (Tabacco et al 1979).
-ASAT : méthode à la malate déshydrogénase (Gella et al 1985; Burtis et al 2006).
-ALAT : méthode au lactate déshydrogénase (Gella et al 1985; Burtis et al 2006).
L’électrophorèse des protéines sériques a été réalisée sur gel d’agarose (Lissoir et al 2003; Kouamo and Sawadogo 2011) afin de déterminer les différentes fractions protéiques (protéines totales, albumines et globulines).
Un diagnostic de gestation a été effectué par échographie transabdominale 40 jours après l’IA à l’aide d’un échographe portable de type Agroscan à sonde sectorielle 3,5 Mhz (Karen et al 2004a).
Le logiciel « SPSS 10.0 pour Windows » a été utilisé pour l’analyse statistique. Le test de Student a été utilisé pour la comparaison des moyennes. Le seuil de signification « p » choisi a été fixé à 5%.
Sur les 272 chèvres synchronisées, 227 ont répondu au traitement d’induction de l’œstrus à base de Cronolone, soit un taux d’induction de 83,5%. 16,5% étaient soit absentes (11,6%) au moment du retrait de l’éponge et/ou de l’IA, soit écartées pour perte d’éponge (4,9%).
Suite au diagnostic échographique 40 jours après l’IA, 148/227 chèvres étaient gravides, soit un taux de gravidité de 65,2 %. Mais cette fertilité variait suivant l’état nutritionnel des animaux.
Le tableau 1 présente les variations des paramètres biochimiques en fonction des états physiologiques des chèvres inséminées.
|
Tableau 1. Moyenne (± écart type) des paramètres protéiques et enzymatiques sanguins en fonction du statut physiologique des chèvres inséminées. |
|||
|
Paramètres sanguins |
Statuts physiologiques |
V. Ph. |
|
|
Non gravides |
Gravides |
|
|
|
Urée en mmol/L |
9,82±1,29a |
7,43±1,28b |
4 et 12 mmol/L |
|
Protéines totales en g/L |
102,16±17,42a |
97,01±13,66a |
60 et 80 g/L |
|
Albumines en g/L (%)
|
45,38±7,67a (48,59±5,08) |
37,09±5,01b (44,99±4,21) |
46-50 % |
|
α1Globulines en g/L (%)
|
6,47±1,59a (4,19±0,98) |
5,42±4,23a (5,39±3,12) |
2 - 4% |
|
α2Globulines en g/L (%)
|
11,45±4,84a(8,81±3,63) |
12,39±4,71a (10,83±3,58) |
8- 10% |
|
βGlobulines en g/L (%)
|
6,25±2,66a (6,04±2,62) |
7,08±2,68a (6,49±2,93) |
9 - 13% |
|
γGlobulines en g/L (%)
|
32,61±7,56a (33,44±5,08) |
35,03±6,56a (34,51±6,89) |
26 - 30% |
|
A/G |
0,80±0,3a |
0,50±0,2b |
0,70-1,30% |
|
ALAT en UI/L |
17,12±5,22a |
17,05±3,97a |
16 et 33 UI/L |
|
ASAT en UI/L |
103,51±12,26a |
98,27±20,83a |
28 et 96 UI/L |
|
a.b les lettres différentes indiquent que la différence entre les moyennes est significative horizontalement. A : Albumines; G : Globulines ; V.Ph. : Valeur physiologique (Kaneko et al 2008) |
|||
Le taux d’induction obtenu est comparable à ceux obtenus par Martemucci et al (1987), Fitzgerald et al (1985), Rubianes and Menchaca (2003), Simonetti et al (2000), Dogan and Nur (2006), Ataman et al. (2006), Kor et al (2012); et supérieur au 77,52% obtenu par Djakba (2007). L’efficacité de ce traitement est due au fait que le FGA prévient la formation d’un nouveau corps jaune (Ungerfeld et Rubianes 1999; Wildeus 2000) tandis que le cloprosténol assure la lutéolyse et l’eCG améliore la synchronisation en accélérant la maturation folliculaire et l’ovulation. Amer et Hazzaa (2009) utilisant 40mg de FGA pour 6-12 jours sans eCG et 40mg FGA pour 6-12 jours avec l’eCG (500IU) pour évaluer leurs effets sur la fertilité des brebis Rahmani durant l’anoestrus ont trouvé que l’eCG combiné au FGA en 12 jours à améliore les performance de reproduction.
Le taux de femelles gravides obtenu par échographie est comparable à d’autres études notamment Leboeuf et al (2000) chez la chèvre Boer, Kusina et al (2000) chez la chèvre Mashona, Romano (1998) chez la chèvre Nubian, Zarkawi et al (1999) chez la chèvre Damacus; inférieure à celui obtenu par Ataman et al (2006) chez les croisés Akkaraman, Rwakazina (2005) chez la chèvre Boer, Bocquier et al (2000) chez la chèvre Alpine ainsi que Brice et al (2000); mais supérieur au 62%, 31% et 21% obtenus par Omontese et al (2013), Djakba (2007) et Mbaindingatoloum (2003) chez la chèvre sahélienne respectivement. Ces différences pourraient s’expliquer par plusieurs facteurs notamment la saison (Pierson et al 2003), la race, l’âge, l’exposition au mâles, la note d’état corporelle et l’absence de pathologie apparente (Mellado et al 2000; Romano 2002) et également les facteurs nutritionnels.
L’urée sérique chez un animal en bonne santé est un indicateur de l’équilibre entre l’apport azoté et énergétique de la ration (Vagneur 1992; Tremblay 1996). Bien que les valeurs moyennes de l’urémie chez toutes les chèvres étaient comprises dans la fourchette des valeurs physiologiques, ces valeurs sont statistiquement plus élevées chez les chèvres non gestantes que chez les gestantes. Ce qui corrobore les travaux de Hafid (2006) en saison sèche, Mbassa et Poulsen (1991) chez les chèvres Landrace Danish et de Sandabe et al (2004) chez la chèvre du Sahel. L’augmentation de l’urémie chez les femelles non gestantes pourrait être expliquée par une parasitose (Ndoutamia et al 2002) ou une récupération de réserves corporelles pendant la période d’entretien. L’urémie élevée a un effet négatif sur le taux de réussite de l’insémination artificielle (Froidmont et al 2002 ; Westwood et al 2002; Leye 2004, Bofia 2008 ; Kouamo et al 2011). En effet, les augmentations de l’urémie et de l’ammoniémie induite ont pour effet une diminution du pH utérin, affectant la survie des spermatozoïdes (Elrod et Bulter 1993); un effet cytotoxique sur les spermatozoïdes et l’ovocyte voire sur l’embryon, en limitant la capacité des oocytes à devenir les blastocytes (Elrod et Bulter 1993); une diminution de la progestéronémie (Butler 1998) et une augmentation de la sécrétion de PG2α (Butler 1998). De plus, la transformation de l’ammoniac en urée est coûteuse en énergie, ce qui n’est pas souhaitable en période de déficit énergétique.
L’augmentation de la protéinémie totale (à plus de 80g/l) observée pourrait être due soit à une hémoconcentration qui a lieu, dans la majorité des cas, lorsque l’animal présente une déshydratation, soit à une élévation de la globulinémie totale observée aussi bien chez les gravides et non gravides (rapport A/G dans le tableau I) suite à un processus infectieux ou inflammatoire aigüe ou chronique (Braun et al 1992; Brugere- Picoux et Remy 1995b; Sattler 2003) , soit à une mobilisation des réserves protéiques maternelles pour la satisfaction des besoins fœtaux en acides aminés (EL-Sherif et Assad 2001; Meziane 2001). Brisson (2003) montre un impact négatif très marqué de l’augmentation du niveau de protéines brutes de la ration sur la reproduction.
Dans cette étude, les valeurs de l’ALAT sont restées physiologiques et celles de l’ASAT ont été légèrement élevées. Ce qui corrobore les observations de Ouédraogo et al (2008), où l’activité de l’ALAT avait augmenté de manière transitoire seulement à J60 et de manière significative chez les femelles gravides, bien que restant dans les valeurs physiologiques et où la transaminase glutamique oxalo-acétique (TGO) avait augmenté de 56 UI/L à 114 UI/L. Néanmoins ces deux enzymes n’ont pas d’effet significatif sur la fertilité et pour conclure à une lésion quelconque, les concentrations en ASAT devraient augmenter de façon très importante (plus de 10 fois les valeurs usuelles).
Les auteurs remercient la région Poitou-Charentes pour avoir initiée et soutenue ce programme, le ministère de l’élevage du Sénégal, le conseil régional de Fatick, l’Ancar, le Prolait, le Fresyca et Mathieu Gloria.
Amer H A and Hazzaa A M 2009 The effect of different progesterone protocols on the reproductive efficiency of ewes during the non-breeding season. Veterinarski Arhiv 79 (1): 19-30. http://www.google.sn/url?sa=t&rct=j&q=&esrc=s&source=web&cd=1&ved=0CCsQFjAA&url=http%3A%2F%2Fwww.vef.unizg.hr%2Fvetarhiv%2Fpapers%2F2009-79-1-3.pdf&ei=rCPZUqKZF9HI0AWo7IHADg&usg=AFQjCNEm6QfCZaKgysiDvBgFrgL0bQ_EHA&bvm=bv.59568121,d.d2k
Ataman M B, Aköz M and Akman O 2006 Induction of synchronized oestrus in akkaraman cross-bred ewes during breeding and anestrus seasons: the use of short-term and long-term progesterone treatments. Revue de Médecine vétérinaire 157 (5): 257-260. http://www.revmedvet.com/artdes-us.php?id=1423
Bocquier F, Leboeuf B, Rouel J and Chilliar Y 2000 Effet du niveau alimentaire et du protocole d’IA sur les performances de reproductions de chevrettes Alpines. In: 7ème rencontres Recherches Ruminants- Paris, les 6 et 7 décembre.-Paris INRA-IGA, Institut de l’élevage : 221-225.
Bofia B H 2008 Etude de l’influence des paramètres énergétiques, protéiques et minéraux sur le taux de réussite de l’insémination artificielle dans la région de Thiès au Sénégal. Thèse de médecine vétérinaire de Dakar: 10.
Braun J P, Bezille P, Garnier F and Rico A G 1992 Technique de diagnostic rapide en biochimie clinique chez les ruminants. In : Le recours au laboratoire en buiatrie, Paris 16-17 Décembre : 124-129.
Brice G, Leboeuf B and Chemineau P 2000 Reproduction Caprine : Contraintes pour les éleveurs ayant la démarche « Qualité » (A.O.C) et agriculture Biologique : Solutions envisageables). In : 7ème Rencontres Recherches Ruminants- Paris ; les 6 et 7 décembre.-Paris INRA-IGA, Institut de l’élevage, 288-291.
Brisson J 2003 Nutrition, alimentation et reproduction In : Symposium sur les bovins laitiers, 30 octobre, Saint- Hyacinthe- Québec : CRAAQ, 66 pages.
Brugere- Picoux J and Remy 1995b Biochimie clinique. La dépêche technique 46 : 9-21.
Bulter W R 1998 Review: effect of protein nutrition on ovarian and uterin physiology in dairy cattle. Journal of dairy science 81: 2533-2539. http://www.journalofdairyscience.org/article/S0022-0302%2898%2970146-8/abstract
Burtis C A, Ashwood E R and Bruns D E 2006 Tietz textbook of clinical chemistry and molecular diagnostics. 4th ed. St. Louis: Saunders: 353-407.
Djakba A 2007 Evaluation des paramètres de reproduction chez la chèvre du Sahel inséminée artificiellement et de la croissance des chevreaux dans la région de Fatick au Sénégal. Thèse de médecine vétérinaire de Dakar: 39.
Dogan I and Nur Z 2006 Different estrous induction methods during the non-breeding season in Kivircik ewes. Veterinary medicine 51: 133-138. http://www.google.sn/url?sa=t&rct=j&q=&esrc=s&source=web&cd=1&ved=0CCsQFjAA&url=http%3A%2F%2Fvri.cz%2Fdocs%2Fvetmed%2F51-4-133.pdf&ei=vBvZUtOcLOuX0AX8noG4CQ&usg=AFQjCNHFioo_AV19eXpfKDI5Ib1tN8XtCg&bvm=bv.59568121,d.d2k
El_Sherif M M A and Assad F 2001 Changes in some blood constituents of Barki ewes during pregnancy and lactation under semi-arid conditions. Small Ruminant Research 40: 269-277.
Elrod C C and Bulter W R1993 Reduction of fertility and alteration of uterine pH in heifers fed excess ruminally degradable protein. Journal of animal science 71: 694-701. http://www.google.sn/url?sa=t&rct=j&q=&esrc=s&source=web&cd=2&ved=0CDcQFjAB&url=http%3A%2F%2Fwww.researchgate.net%2Fpublication%2F14736467_Reduction_of_fertility_and_alteration_of_uterine_pH_in_heifers_fed_excess_ruminally_degradable_protein%2Ffile%2F9fcfd508ff42d979a4.pdf&ei=iBvZUrfYEPLK0AX5nYF4&usg=AFQjCNHHrphrGJkwGAu9qNoA-LaUt30PIg&bvm=bv.59568121,d.d2k
FAO 2008 Données statistiques de la FAO (FAO-STAT) de février en ligne. Adresse URL : http://dad.fao. org/fr/home.htm.
Faye B and Alary V 2001 Les enjeux des productions animales dans les pays du Sud. Productions animales 14: 3-13. http://www6.inra.fr/productions-animales/2001-Volume-14/Numero-1-2001/Les-enjeux-des-productions-animales-dans-les-pays-du-Sud
Fitzgerald J A, Rugless A J, Steliflug J N and Hansel W 1985 A seven-day synchronization method for ewes using medroxiprogesterone acetate (MAP) and prostaglandin F2. Journal of animal science 61: 465-469.
Froidmont E, Thewis A and Barttiaux-Thill N 2002 L’urémie (lait/plasma) peut relever un apport excessif de protéines limitant la fertilité des ruminants. Rencontres Recherches Ruminants (3R) 9: 159. http://www.journees3r.fr/spip.php?article895
Gella F J, Olivella T, Cruz Pastor M, Arenas J, Moreno R, Durban R and Gomez J A 1985 A simple procedure for routine determination of aspartate aminotransferase and alanine aminotransferase with pyridoxal phosphate. Clinica Chemica Acta 153: 241-247.
Hafid N 2006 Influence de l’âge, de la saison et de l’état physiologique des caprins sur certains paramètres sanguins. Mémoire Magister en Science Vétérinaire de l’Université El-HADJLAKHDAR-BATNA, 101 pages.
Kaneko J J, Harvey J W and Bruss M L 2008 Clinical Biochemestry of Domestic Animals. 6th ed. Academic Press, San Diego. 916p.
Karen A, Szabados K, Reiczigel J, Beckers J F and Szenci O 2004a Accuracy of transrectal ultrasonography for determination of pregnancy in sheep: effect of fasting and handling of the animals. Theriogenology 61: 1291-1298.
Kor N M, Khanghah M K and Ali A 2012 Efficiency of short time protocols based on combined FGA, PGF2α, GnRH and eCG treatments on oestrus synchronization and reproductive performance of kermani ewes during the breeding season. International journal of biology and medical research 3(3): 1966-1970.
Kouamo J and Sawadogo G J 2011 Enzymatic and electrophoretic profiles of serum proteins of the inseminated Sahelian goats in Senegal. In: Proceedings Third life science and animal production conference, CAFOBIOS, Dschang, 26-68 may, Cameroon (Abstr.) p34.
Kouamo J, Leye A, Ouédraogo G A, Sawadogo G J and Benard P 2011 Influence des paramètres énergétiques, protéiques et minéraux sur la réussite de l’insémination artificielle bovine en élevage traditionnel dans la région de Thiès au Sénégal. Revue de Médecine vétérinaire 162, (8-9): 425-431. http://www.google.sn/url?sa=t&rct=j&q=&esrc=s&source=web&cd=1&ved=0CCkQFjAA&url=http%3A%2F%2Fwww.revmedvet.com%2F2011%2FRMV162_425_431.pdf&ei=GRjZUvfHMYa-0QWovoGIBg&usg=AFQjCNFnM4BsCpo30xiZn_JMIEd5EBkp2Q
Kusina N T F, Tarwirei H, Hamudikuwanda G, Agumba J., Mukwena 2000 A comparison of the effects of progesterone sponges and ear implants, PGF2α, and their combination of efficacy of estrus synchronization and fertility of Mashona goat does. Theriogenology 53: 1567–1580.
Leboeuf B, Benelas D and Berson Y 2000 Effet de la race de la chèvre laitière et du bouc sur la fertilité après IA. In: 7eme Rencontres Recherches Ruminants- Paris, les 6 et 7 décembre.-Paris : INRA-IGA, Institut de l’élevage, 235.
Leye B 2004 Impact de la nutrition azotée sur la fertilité des femelles Gobra en élevage traditionnel. Mémoire de diplôme d’études approfondies de Dakar (EISMV), 30p.
Lissoir B, Wallemacq P et Maisin D 2003 Électrophorèse des protéines sériques : comparaison de la technique en capillaire de zone Capillarys ® (Sebia) et de l’électrophorèse en gel d’agarose Hydrasys ® (Sebia). Annales de Biologie Clinique 61 (5): 557-562.
Martemucci G, Manchisi A, Toteda F, Gambacorta M and Bellitti E 1987 Manifestazioni dell’estro in pecore trattate con prostaglandina F2α naturale o progestageno (FGA) e PMSG. Alcune osservazioni sulle performances riproduttive dopo inseminazione artificiale (Occurrence of oestrus in ewes treated with prostaglandin F2α or progestagen (FGA) and PMSG. Some observations on lambing performance after artificial insemination). Zootechnie Nutrition Animal 13: 39-49.
Mbaidingatoloum F M 2003 Essai d’un protocole d’insémination artificielle chez les chèvres sahéliennes en milieu réel : résultats préliminaires. Mémoire DEA: Productions animales, Dakar (EISMV), 30 pages.
Mbassa G K and Poulsen 1991 Influence of pregnancy, lactation and environnement on some clinical chemical reference values in Danish landrace dairy goats (Capra hircus) of different parity. II Plasma urea, creatinin, bilirubin, cholesterol, glucose and total serum proteins. Comparative Biochemistry and Physiology 100(2): 423-431.
Mellado M, Olivas R and Ruiz F 2000 Effect of buck stimulus on mature and pre-pubertal norgestomet-treated goats. Small Ruminant Research 36: 269–274.
Meziane T 2001 Contribution à l’étude de l’effet de la salinité de l’eau de boisson et d’un régime à base de paille chez les brebis de race Ouled Djellal dans les hauts plateaux sétifiens. Thèse Doctorat de Médecine vétérinaire (Constantine), 162p.
NdoutamiaG, Mbakasse R N, Brahim A et Khadidja A 2002 Influence de la Trypanosomose à T. congolense sur les paramètres hématologiques, minéraux et protéo-énergétiques chez les chèvres sahéliennes du Tchad. Revue de médecine vétérinaire 153, (6) : 395-400. http://www.revmedvet.com/artdes-fr.php?id=1062
Omontese B O, Rekwot P I, Ate I U, Rwuaan J S and Makun H J 2013 Comparative estrus induction in indigenous Sahel goats using two progestagens (CIDR and FGA) and eCG.Livestock Research for Rural Development. Volume 25, Article #66. Retrieved January 17, 2014, from http://www.lrrd.org/lrrd25/4/omon25066.htm
Ouédraogo G A, Barry M, Kanwé B A et Sawadogo G J 2008 Variations des profils métaboliques lors de gestation à terme et d’avortement chez des chèvres Mossi au Burkina Faso. Revue de Médecine vétérinaire 159 (5): 282-287. http://www.revmedvet.com/artdes-fr.php?id=1623
Pierson J T, Baldassarre H, Keefer C L and Downey B R 2003 Influence of GnRH administration on timing of the LH surge and ovulation in dwarf goats. Theriogenology 60: 397–406.
Romano J E 1998 Effect of two doses of cloprostenol in two schemes for estrous synchronization in Nubian does. Small Ruminant Research 28: 171–176.
Romano J E 2002 Does in proestrus-estrus hasten estrus onset in does estrous synchronized during the breeding season. Applied Animal Behavior Science 77: 329–344.
Rubianes E and Menchaca A 2003 The pattern and manipulation of ovarian follicular growth in goats. Animal Reproduction Science 78: 271-287.
Rwakazina O 2005 Evaluation de la productivité en milieu réel et en station de la chèvre Boer au Rwanda. Thèse de médecine vétérinaire de Dakar: 38.
Sandabe U K, Mustapha A R and Sambo F Y 2004 Effect of pregnancy on some biochemical parameters in Sahel goats in semi-arid zone. Veterinay research 28(4): 279-85.
Sattler N 2003 Intérêts et limites des analyseurs en buiatrie. Le Point Vétérinaire (Num.spé) 34: 32-35.
Simonetti L, Blanco M R and Gardoân J C 2000 Estrus synchronization in ewes treated with sponges impregnated with different doses of medroxyprogesterone acetate. Small Ruminant Research 38: 243-247.
Tabacco A, Meiattini F, Moda E and Tarli P 1979 Simplified enzymic/ colorimetric serum urea nitrogen determination. Clinical Chemistry 25: 336-337. http://www.clinchem.org/content/25/2/336.2.full.pdf+html
Tremblay A 1996 Les bilans biochimiques chez les bovins laitiers de Québec. In: SNGTFV (ed). Pathologie et nutrition: 283-287.
Ungerfeld R and Rubianes E 1999 Effectiveness of short term progestogen primings for the induction of fertile oestrus with eCG in ewes during late seasonal anoestrus. Animal science 68: 349-353.
Vagneur M 1992 Biochimie de la vache laitière appliquée à la nutrition. La Dépêche Technique, supplément technique 28: 1-25.
Westwood C T, Lean I J and Garvin J K 2002 Factors influencing fertility of Holstein dairy cows: a multivariate description. Journal of Dairy Science 85: 3225-3237. http://www.journalofdairyscience.org/article/S0022-0302%2802%2974411-1/pdf
Wildeus S 2000 Current concepts in synchronization of estrus: sheep and goats. Journal of Animal Science 77: 1-14. http://www.journalofanimalscience.org/content/77/E-Suppl/1.40.full.pdf+html
Zarkawi M, Al-Merestani M R and Wardeh M F 1999 Induction of synchronized oestrous in indigenous Damascus goats outside the breeding season. Small Ruminant Research 33: 193–197.
Received 19 January 2014; Accepted 14 February 2014; Published 1 March 2014