Utilização da técnica de produção de gás para determinar a cinética de fermentação dos carboidratos estruturais e não estruturais em sorgo para forragem

R R Noguera, E O Saliba^*, L C Gonçalves^* e R M Mauricio**

Universidad de Antioquia, Escuela de Producción Agropecuaria - GRICA
ricardonoguera@agronica.udea.edu.co
^*Universidade Federal de Minas Gerais, Departamento de Zootecnia, Minas Gerais, Brasil
**FundaçãoEzequel Dias FUNED, Minas Gerais Brasil

Resumo

 

Amostras da forragem inteira e a fibra em detergente neutro (FDN) de cinco genótipos de sorgo colhidos em três estádios de maturação foram incubados in vitro através da técnica de produção de gás com o objetivo de estudar a cinética de fermentação dos carboidratos estruturais e não estruturais. As curvas de produção de gás da fração solúvel em detergente neutro (FSDN) foram obtidas pela diferença entre o volume de gás produzido pela forragem inteira e o volume de gás produzido pela FDN (curvas de subtração).

 

Os maiores volumes de gás para a forragem inteira e a FSDN foram observados na segunda e terceira época de colheita do material. A FDN precisou de prolongados períodos de tempo para que a produção de gás tivesse lugar. Equações de regressão entre o volume de gás e a degradabilidade da MS in vitro foram estabelecidas. As equações de regressão predisseram com boa aproximação a degradabilidade ruminal dos cinco genótipos de sorgo. Quanto aos parâmetros de fermentação estimados pelo modelo foi verificado que a forragem inteira produziu uma maior quantidade de gás quando comparada com os volumes de gás produzidos pela FDN e a FSDN. As maiores taxas de produção de gás foram verificadas na FSDN o que mostra a eficiente utilização desta fração pelos microorganismos ruminais.

Palavras chave: Degradabilidade, forragem, in vitro, produção de gas, Sorgo.

Use of the gas production technique to determine the kinetics of fermentation of the structural and non structural carbohydrates in sorghum forage

Abstract

 

Samples of unfractionated forage and neutral-detergent fiber (NDF) of five sorghum genotypes harvested in different stage of maturity were incubated in vitro using the gas production technique to study the kinetics of fermentation of structural and non structural carbohydrates. The fermentation of neutral detergent-soluble (NDS) fraction was measured using a curve subtraction technique with in vitro gas production data from the whole forage and the isolated neutral detergent-extracted fiber.

 

The higher volumes of gas were observed in the second and third crop time to the whole plant and NDS fraction. The NDF fraction needed long periods of time so that the production of gas begins. Regression equations were established between the volume of produced gas and the degradation of the dry matter in vitro. The regression equations predicted with good approach the degradation in the rumen to the five sorghum genotypes. The higher rates of gas production were observed to NDS fraction indicating an efficient use of this fraction for the ruminal microorganisms.

Key words: Degradability, forage, gas production, in vitro, kinetics, Sorghum.

 

Introdução

 

As forragens contem quantidades variáveis de material solúvel que pode ser extraído mediante sua solubilização em água ou soluções tampão (Van Soest 1994). Esta fração solúvel esta constituída por minerais, proteínas, ácidos orgânicos, açúcares simples e cadeias curtas de polissacarídeos. Os carboidratos solúveis são digeridos pelos microorganismos ruminais mais rapidamente que os carboidratos estruturais como a celulose ou os polissacarídeos de reserva como o amido (Chesson e Forsberg 1988). Pouco é conhecido sobre a cinética de digestão da fração solúvel das forrageiras, isto se deve ao fato de que os estudos de cinética in vitro e in situ acompanham o desaparecimento dos componentes insolúveis da parede celular e a que as técnicas gravimétricas empregadas por estes sistemas não quantificam o material solúvel.

 

Um outro aspecto desconhecido sobre a cinética de digestão da fração solúvel das forrageiras é a possível interação entre a taxa e a extensão da digestão do material potencialmente degradável e a composição da fração solúvel, poucos trabalhos relatam o impacto da fração solúvel sobre a digestão da fibra (Hiltner e Dehority 1983; Pivonka e Firkins 1993; Mertens e Loften 1980). A técnica de produção de gás oferece a possibilidade de estudar a fração solúvel através da técnica de curvas de subtração que permite quantificar e analisar a cinética de digestão da fração solúvel em detergente neutro (FSDN) das forrageiras (Schofield e Pell 1995b).

 

Os atuais sistemas de avaliação de rações como o NRC (1996) e o CNCPS (Cornell Net Carbohydrate and Protein System) (Fox et al 1992; Sniffen et al 1992) predizem o suprimento de nutrientes baseados na estreita relação entre as taxas de digestão e passagem das diferentes frações que constituem o alimento. As taxas de digestão obtidas através da técnica de produção de gás de cada uma destas frações podem ser empregadas nestes modelos nutricionais. Pell et al (1997) afrima que os dados de produção de gás podem prover estimativas mais acuradas do valor energético dos alimentos que as estimativas feitas a partir dos análises de fibra.

 

O presente estudo teve como objetivos determinar como a concentração e a cinética de digestão dos carboidratos solúveis e estruturais varia com o estádio de maturidade da forragem, determinar as possíveis interações entre as cinéticas de digestão das frações solúveis e estruturais e estimar a degradação da materia seca (MS) a partir do volume de gás produzido pelo substrato.

 

Materiais e métodos

 

Fonte e preparação dos substratos

 

Cinco híbridos de sorgo para forragem foram seleccionados para ser empregados neste estudo. Os híbridos Massa 3, Volumax, BR601, BR700 e BR701 foram plantados nas dependencias da EMBRAPA Centro Nacional de Pesquisa Milho e Sorgo (CNPMS) em Minas Gerais, Brasil. Cada híbrido foi plantado em três locais diferentes que constituiram as repetições e coleitados em três épocas de corte diferentes (corte 1= sete días após o florescimento; Corte 2= 28 días após o florescimento; Corte 3= 49 días após o florescimento).

 

Imediatamente após a colheita as plantas enteiras de sorgo foram picadas em partículas com tamanho médio de dois centímetros, empregando-se uma picadeira estacionaria Nogueira modelo DPM-4. O material dos cinco genótipos de sorgo nas três épocas de corte foi individualmente homogenizado, colocado em bandejas de alumínio de peso conhecido e seco em estufa de ventilação forçada com temperatura de 60-65º C, por 72 horas. Após este procedimento, todas as amostras foram moidas através de peneira de 1.0 mm para as análises químicas e o estudo in vitro.

 

Devido ao grande número de substratos (5 híbridos x 3 repetições x 3 épocas de corte = 45 materiais), amostras compostas das três repetições de cada genótipo en cada epoca de corte foram feitas, fazendo um total de 15 substratos para análise (5 genótipos x 3 épocas de corte). Além destes 15 substratos, que constituiram o material original, extrações de fibra em detergente neutro (FDN) de cada material foram feitas de acordo com a seguinte metodología: 4 gramas de cada genótipo em cada época de corte foram pesadas e colocadas em bekers com capacidade para 600 ml, 400 ml de detergente neutro foram adicionados a cada becker e colocados para ferver a 105º C por uma hora (Van Soest et al 1991; Pell e Schofield 1993). Após esse tempo, o conteúdo dos bekers foi filtrado através de sacos de náilon com porosidade de 50mm, o material retido nos sacos foi lavado exaustivamente com água destilada quente e 200 ml de acetona, visando remover todo o detergente da amostra. Inmediatamente após a lavagem o material foi seco em estufa de ventilação forçada a 50º C por 72 horas. Este procedimento foi repetido varias vezes até conseguir a quantidade de material suficiente para a realização do experimento.

 

Técnica de produção de gás

 

Os híbridos de sorgo e suas respectivas frações de FDN foram avaliados empregando a técnica de produção de gás descrita por Theodorou et al (1994). Para o processo de incubação foram usados frascos de vidro com capacidade para 125 ml. Antes do inicio do experimento os frascos de incubação foram lavados com abundante agua e secos em estufa a 110º C por 12 h. Após a secagem os frascos foram saturados com CO₂ e um grama de material original e sua respectiva fração de FDN, foram pesados e colocados em frascos individuais.

 

Um dia antes do inicio do experimento 90 ml de meio de cultura preparado como descrito por Mauricio et al (2001) foi adicionado manualmente a cada frasco mediante a utilização de uma proveta graduada. Os frascos foram vedados com rolhas de borracha (14 mm) e mantidos em geladeira a 4º C para evitar qualquer tipo de fermentação. Cinco horas antes da inoculação os frascos foram removidos da geladeira e levados para estufa a 39º C.

 

Preparação do inoculo e inoculação

 

O líquido ruminal foi obtido de uma vaca fistulada mantida no Hospital Veterinário na Escola de Veterinária da Universidade Federal de Minas Gerais. O animal doador era alimentado com silagem de milho "ad libitum" e 2 kilos de ração concentrada. A coleita do inoculo foi feita às 06:30 h antes da primeira refeição. O líquido ruminal foi retirado manualmente de varias partes do rúmen e armazenado em garrafas térmicas previamente aquecidas com agua a 40º C. Após a coleta, o liquido ruminal foi levado para o Laboratório de Nutrição Animal e filtrado através de duas camadas de panos de algodão, a parte sólida retida nos panos foi rápidamente transferida para um liquidificador com certa proporção de líquido ruminal e liquidificado por 20 segundos. Após este procedimento o material liquidificado foi filtrado novamente e transferido para um erlenmeyer mantido em banho-maria a 39º C sendo continuamente saturado com CO₂. Este procedimento foi feito para garantir que o inoculo resultante estivesse composto por microorganismos ruminais aderidos e não aderidos à fibra (Theodorou et al 1994).

 

Os frascos com o meio de cultura e o substrato foram inoculados com 10 ml de líquido ruminal usando uma seringa graduada de 10 ml. Os frascos totalmente vedados foram agitados manualmente, transferidos para estufa a 39º C (tempo zero) e incubados por um periodo de 96 horas. As leituras de gás foram realizadas nos horarios 2, 4, 6, 8, 10, 12, 15, 19, 24, 30, 36, 48, 72 e 96 horas pósincubação, empregando um transductor de pressão (Bailey and Mackey, Birmingham, UK). Após as leituras nos horários 6, 12, 24, 48 e 96 horas, uma quantidade determinada de frascos contendo o material original e a fração de FDN foi removida com seus respectivos brancos e filtrada através de cadinho de filtragem (porosidade 1) para acompanhar o processo de degradação da MS e a materia orgânica (MO). A MS degradada foi determinada pela secagem a 110º C até obtenção de peso constante. A MO degradada foi obtida pela diferença após obtenção das cinzas (6h a 500º C).

 

Curvas de subtração

 

Neste experimento foram diretamente determinadas as curvas de produção de gás para o material original e para a FDN. A contribuição na produção de gás da fração solúvel em detergente neutro (FSND) foi calculada através da subtração da produção acumulativa de gás do material original e a produção acumulativa de gás da FDN corrigida para a quantidade de FDN contida no material original de acordo com a metodologia sugerida por Schofield e Pell (1995a) e Stefanon et al (1996).

 

Curvas de ajuste

 

As curvas de produção de gás foram ajustadas através de um modelo gompertz que supõe que a taxa de produção de gás é proporcional à atividade microbiana, mas a proporcionalidade diminue com o tempo de incubação o que pode ser interpretado como a perda de eficiência na taxa de fermentação com o tempo. A equação que representa este modelo é:

 

V_T=V_F x exp(- c)(exp (-A x t))

 

Onde V_T corresponde a volume de gás no tempo t, V_F é o volume de gás correspondente à completa digestão do substrato (asintota), A é um fator de eficiência microbiana, c representa uma taxa específica semelhante à taxa de degradação (h^-1). As curvas de ajuste e as estimativas dos parâmetros de interesse biológico foi feito através do processo interativo do algoritmo Marquardt, com a ajuda do procedimento para modelos não lineares (PROC NLIN) do Statistical Analysis Systems Institute Inc. (1985).

 

Delineamento experimental e Análises estatísticas

 

As análises estatísticas para a comparação dos tratamentos quanto aos valores de composição química e parâmetros estimados através das curvas de produção de gás foram feitas usando-se o General Linear Model Procedures (PROC GLM) do SAS (1985) segundo um delineamento fatorial 5 x 3 (5 genótipos x 3 épocas de corte) em concordância com o seguinte modelo:

 

Y_{i, j ,k} = m+ M_i + T_j + (MT)_{i, j} + e_{i, j, k}

 

Onde:

m = Média geral da varável em estudo;

M_i = Efeito do i-ésimo genótipo (i = Massa 3, Volumax, BR 601, BR 700 e BR 701);

T_j = Efeito do j-ésimo corte (j = sete, 24 e 49 dias);

(MT)_{i, j} = Efeito do i-ésimo genótipo com o j-ésimo corte;

e_i,j,k = Erro experimental;

 

As comparações das medias dos tratamentos e suas respectivas interações foram feitas usando-se o procedimento PROC GLM (OPTION LSMEANS) do SAS (1985).

 

Resultados e discussão

 

A composição química dos cinco genótipos de sorgo em cada estádio de maturação é apresentada na tabela 1.

O modelo gompertz descrito por Noguera et al (2004), mostrou melhor capacidade de ajuste em termos de coeficiente de determinação e soma quadrado do erro (SQE) na estimativa dos parâmetros da cinética de produção de gás (tabela 2).

Como verificado na tabela, na primeira época de colheita do material houve diferenças estátisticas (p<0.05) entre os genótipos em estudo para a variável volume de gás produzido. Os maiores valores foram observados para os genótipos Massa 3 (251.63 ml/g de MS) e BR 701(250.36 ml/g de MS) apresentado diferenças estatísticas significativas unicamente para o genótipo Volumax (227.3 ml/g de MS). Os genótipos BR 601 e BR 700 produziram volumes de gás muito próximos (243.54 e 243.06 ml /g de MS, respectivamente) verificando-se apenas variações numéricas quando comparados com os genótipos Massa 3, BR 701 e Volumax. O modelo estimou semelhantes taxas de degradação e fatores constantes de eficiência microbiana para todos os genótipos, sem que foram verificada diferenças estatísticas (p>0.05).

 

Na segunda época de colheita do material, significativas diferenças (p>0.05) nos valores médios dos volumes de gás produzido foram verificadas entre genótipos. Os genótipos Massa 3 (272.88 ml /g de MS), BR 601(252.26 ml /g de MS) e BR 700 (246.25 ml /g de MS) apresentaram os maiores volumes, verificando-se apenas diferenças numéricas entres seus valores médios. Os menores valores foram registrados para os genótipos BR 701 (221.83 ml /g de MS) e Volumax (242.96 ml /g de MS) embora tenham sido estatisticamente equivalentes (p>0.05) dos genótipos BR 700 e BR 601 respectivamente.

 

Equivalentes taxas de produção de gás (c) (p>0.05) foram estimadas pelo modelo para os genótipos BR 701 (6.5 ml/h), BR 700 (6.3 ml/h), Massa 3 (6.2 ml/h) e volumax (5.6 ml/h). A menor taxa de produção de gás foi verificada no genótipo BR 601 com 4.5 ml /h, cujo valor mostrou ser estatisticamente inferior do registrado para o genótipo BR 701. Os fatores de eficiência microbiana foram equivalentes entre genótipos (p>0.05) variando de 3.13 a 3.87.

 

Quando comparados os volumes de gás produzidos na terceira época de colheita do material, nenhuma diferença estatística foi observada entre os valores médios dos genótipos Massa 3 (263.48 ml /g de MS), BR 701 (256.07 ml /g de MS), BR 601 (244.57 ml /g de MS) e BR 700 (244.46 ml /g de MS). Já o genótipo Volumax registrou o menor volume de gás com 229.17 ml /g de MS apresentando diferenças estatísticas (p>0.05) unicamente para o genótipo Massa 3, mostrando-se equivalente com os outros materiais avaliados neste experimento. Nenhuma diferença estatística foi observada entre genótipos para as taxas de produção de gás e os fatores de eficiência microbiana cujos valores médios variaram de 4.6 a 5.8 ml/h e de 3.14 a 3.83.

 

Houve interação estadisticamente significativa (P< 0.05) entre os genótipos e o estádio de maturação(tabela 2). As maiores produções de gás foram observadas na segunda e terceira época de colheita do material em todos os genótipos quando comparadas com a primeira. Estas maiores produções de gás podem ser atribuídas ao fato de que com o avanço no estádio de maturidade, as plantas de sorgo apresentaram uma maior quantidade de panículas e grãos em estado pastoso e farináceo, sendo assim, maiores quantidades de amido teriam propiciado um maior potencial de fermentação e produção de gás nestas épocas de corte.

 

Da mesma forma em todas as épocas de corte foram observadas diferenças significativas (p<0.05) entre genótipos para a variável volume de gás produzido. Isto sugere que existem diferenças entre cultivares na sua composição química principalmente no conteúdo de carboidratos, uma vez que alimentos com maiores quantidades de carboidratos solúveis propiciam uma maior fermentação ruminal e consequentemente, maior produção de gás em relação a outros com maior proporção de carboidratos estruturais (Parede celular).

 

De acordo com Beuvink e Kogut (1993) a parede celular das forrageiras pode ser dividida em três frações: 1. Fração solúvel de rápida fermentação, 2. Fração lentamente fermentável e 3. Fração não fermentável, principalmente constituída por material lignificado. As interações e a proporção de cada uma destas frações nas plantas forrageiras determina a taxa e a extensão da fermentação ruminal.

 

A técnica de produção de gás permite o estudo da cinética de fermentação dos carboidratos estruturais e da fração solúvel dos alimentos através da técnica de curvas de subtração, que permite quantificar e analisar a cinética de digestão da fração solúvel em detergente neutro (FSDN) das forrageiras. A fração solúvel se encontra principalmente constituída por proteínas, minerais, ácidos orgânicos açúcares simples e alguns polissacarídeos não estruturais. Pouco é conhecido sobre a cinética de digestão da fração solúvel das forrageiras e as possíveis interações que existem entre a taxa e a extensão da digestão do material potencialmente degradável e a composição da fração solúvel. Por tal motivo, foi desenhado um experimento onde o material original e a FDN de cinco genótipos de sorgo colhidos em diferentes épocas de corte foram incubados in vitro através da técnica de produção de gás para estudar sua cinética de fermentação.

 

As curvas de produção de gás para os cinco genótipos de sorgo colhidos em três estádios de maturação, normalizados para a quantidade de material estudado (1g de MS) são apresentados na figura 1.

A contribuição na produção de gás da fração FSDN mostrou ser maior na segunda e terceira época de colheita do material quando comparada com a primeira, o que confirma que a presença de uma maior quantidade de grãos em estado pastoso e farináceo contribuindo na maior produção de gás nestas épocas de corte, pela maior quantidade de carboidratos rapidamente fermentáveis. Independentemente da época de corte e do genótipo a FDN precisou de prolongados períodos de tempo para que a produção de gás tivesse lugar o que mostra a dificuldade dos microorganismos para colonizar e degradar substratos deficientes em carboidratos rapidamente fermentáveis.

 

As curvas na figura 1 sugerem que a FSDN tem um importante papel no inicio do processo fermentativo. A fração solúvel constitui um substrato energético de rápida fermentação para os microorganismos, facilitando assim os processos de adesão e colonização do substrato, mas sua importância começa a diminuir com o transcorrer do tempo quando uma maior quantidade de constituintes da parede celular começam a ser disponíveis. A figura 2 mostra a percentagem média de gás produzido pela FSDN dos cinco genótipos de sorgo, nas três épocas de corte como uma função do tempo. Para todos os genótipos esta percentagem foi maior de 90% nas primeiras 12 horas de incubação e diminuiu em torno de 50% após de 24 horas de iniciado o processo fermentativo. Com 48 horas de incubação a participação da FSDN na produção total de gás é aproximadamente do 12 % o que indica que em horários superiores a 24 horas de incubação uma grande parte da produção de gás procede da fermentação dos constituintes estruturais da parede celular.

Pell e Schofield (1993) trabalhando com alfafa, trevo e pasto guinea relataram uma relação linear entre o volume de gás produzido e a degradabilidade da MS, encontrando que por cada mg de MS fermentado eram produzidos 0.37 ml de gás. Para examinar a mesma relação entre a degradação da MS e o volume de gás produzido pelos cinco genótipos de sorgo empregados neste experimento foi feita uma análise de regressão. As equações que predizem a degradação da MS a partir do volume de gás produzido durante a incubação in vitro são apresentadas na tabela 3.

Independentemente da época de corte foram observados altos coeficientes de determinação (R2) para todos os genótipos, sempre superiores a 98% o que era esperado uma vez que o volume de gás produzido depende diretamente da quantidade de substrato fermentado. Os gases produzidos durante a incubação in vitro são originados pela fermentação dos carboidratos a acetato, propionato e butirato, com a consequênte formação de CO₂ e CH₄. Uma pequena proporção de gás pode ser originada a partir da solução tampão (CO₂ liberado do tampão bicarbonato).

 

Para verificar a acuracia das equações de regressão em predizer a degradação da MS os substratos em avaliação foram submetidos a um estudo de degradação in situ. Uma variação de ± 3 unidades percentuais como critério para determinar se as percentagens de degradação da MS estimadas pelas equações de regressão sub ou sobre-estimam os valores observados na degradação in situ após 96 horas de incubação ruminal, foi estabelecido. 60% das equações tenderam a sobre-estimar as percentagens de degradação. Não obstante, 40% das equações predizeram com boa aproximação os valores de desaparecimento observados na técnica in situ. As diferenças observadas entre as técnicas podem ser atribuídas a variações no tamanho de partícula e na velocidade de hidratação das partículas, sendo que menores tamanhos facilitariam a rápida hidratação adesão e colonização do substrato pelos microorganismos ruminais.

Os volumes de gás produzido por cada mg de MS fermentado para os cinco genótipos foram: Massa 3 0.29 ml, BR 700 0.27 ml, BR 601 0.26 ml, BR 701 0.26 ml e Volumax 0.25 ml, respectivamente. As diferenças entre genótipos mostram as variações na composição da MS e principalmente nas proporções de carboidratos estruturais e não estruturais pois são eles os principais responsáveis pela produção de gás durante a incubação in vitro.

 

Na tablea 4 são descritos os volumes de gás produzido (ml /g de MS), as taxas de produção de gás (ml/h) e os fatores de eficiência microbiana da planta inteira, da FDN e da FSDN de cinco genótipos de sorgo colhidos em três estádios de maturidade, estimados pelo modelo gompertz.

Os maiores volumes de gás foram verificados no genótipo Massa 3, sendo superior a todos os genótipos testados neste experimento. A menor capacidade de fermentação foi observada no genótipo Volumax que produziu os menores volumes de gás nos três períodos de colheita do material.

 

A técnica de curvas de subtração permitiu identificar grandes variações nos volumes de gás produzido pelas diferentes frações do alimento. Em todas as épocas de corte a planta inteira apresentou maior potencial de fermentação quando comparada com a FDN e a FSDN o que era esperado uma vez que a planta inteira encerra o efeito aditivo e associativo das duas frações. Segundo Van Soest (1994) com o avanço no estádio de maturidade da planta ocorre um endurecimento da parede secundaria das células vegetais como resultado do processo de lignificação. O tamanho da celula é constante e o crescimento da parede secundaria das células ocorre a expensas da redução do espaço intracelular, diminuindo consequentemente a quantidade de material solúvel. Este fato não foi claramente observado neste experimento uma vez que plantas como o milho e o sorgo produzem grandes quantidades de grãos que aportam carboidratos solúveis de rápida fermentação permitindo manter o seu valor nutricional por uma maior quantidade de tempo.

 

Diferentes taxas de produção de gás foram verificadas entre frações. Como esperado as maiores taxas foram verificadas na FSDN uma vez que esta fração esta constituída principalmente por carboidratos solúveis proteína e minerais que constituem uma fonte de energía prontamente disponível para os microorganismos ruminais no inicio do processo fermentativo. As taxas de degradação da FSDN variaram de 13 a 25 ml/h, valores inferiores aos reportados por Schofield e Pell (1995a) que trabalhando com diferentes gramineas e leguminosas reportam valores variando de 35 a 65 ml/h. Sniffen et al (1992) publicou um modelo nutricional que asume taxas de digestão 100 a 400%/h para açúcares e ácidos orgânicos. As menores taxas de produção de gás foram verificadas para a FDN fato associado com os prolongados tempos observados antes do que processo fermentativo tenha lugar. O modelo estimou taxas de degradação para a planta inteira muito próximas entre genótipos, o que impossibilitou a classificação dos materiais com base nesta variável.

 

Os valores de eficiência microbiana (A) descritos como crescimento microbiano, variaram significativamente entre frações. Os valores estimados pelo modelo para a FSDN foram superiores aos verificados para a planta inteira e a FDN, o que indica a eficiente utilização dos substratos rápidamente fermentaveis pelos microorganismos ruminais. É interessante observar que a eficiência microbiana foi maior na FDN que na forragem inteira em todas as épocas de corte, indicando uma maior eficiência de aproveitamento da fração fibrosa do alimento por parte dos micoorganismos ruminais. Schofield (2000) reporta que o tratamento com detergentes para a obtenção da FDN pode alterar as propriedades físicas e químicas desta fração, modificando consequentemente a taxa e a extensão da degradação da fibra. Se esta afirmação é verdadeira a técnica de curvas de subtração poderia ser invalida, uma vez que melhoras na digestibilidade da fibra por seu tratamento com detergentes diminuiria a relativa importância da FSDN dentro do processo fermentativo.

 

Conclusões

 

O volume de gás produzido durante a incubação in vitro mostrou uma relação linear com a degradação da MS o que permitiu estabelecer equações de regressão que predizeram com boa aproximação a degradabilidade ruminal dos cinco genótipos de sorgo.

 

A diferença da técnica in situ ou metodos gravimétricos in vitro que estimam com reduzida precisão a fermentação da fração solúvel do alimento a técnica de produção de gás permitiu estimar as taxas de degradação dos carboidratos solúveis e estruturais, facilitando assim o estudo da cinética de fermentação das diferentes frações que constituem o alimento. Contudo, precausão deve ser tomada na interpretação dos resultados da cinética de fermentação das frações solúveis e insolúveis dos carboidratos totais uma vez que o isolamento de cada uma destas frações mediante o emprego de detergentes pode modificar a estrutura química e a natureza física do alimento, alterando consequentemente as taxas e a extensão da degradação. É importante salientar que a cinética de degradação da FDN em plantas com fatores antinutricionais como os taninos, alcaloides e inibidores enzimáticos pode ser alterada uma vez que estes fatores podem ser removidos durante o processo de obtenção da FDN.

 

Referências bibliográficas

 

Beuvink J M and Kogut J 1993 Modelling gas production kinetics of grass silages incubated with buffered ruminal fluid. Journal of Animal Science. 71:1041 - 1046.

 

Chesson A and Forsberg C W 1988 Polysaccharide degradation by rumen microorganisms. In: Hobson, P.N. (Ed.). The rumen microbial system. London: Elsevier Applied Science, p. 251 - 283.

 

Fox D G, Sniffen C J, O'Conor J D, Russell J B and Van Soest P J 1992 A net carbohydrate and protein system for evaluating catlle diets: III. Cattle diets and diet adequacy. Journal of Animal Science. 70: 3578 - 3596.

 

Hiltner P and Dehority A 1983 Effect of soluble carbohydrates on digestion of cellulose by pure cultures of rumen bacteria. Appl. Enviroment Microbiology. 46: 642- 651.

 

Mauricio R M, Owen E, Mould F L, Givens I, Theodorou M K, France J, Davies R D and Dhanoa M S 2001 Comparison of bovine rumen liquor and bovine faeces as inoculum for an in vitro gas production technique for evaluating forage. Animal Feed Science and Techonology. 89: 33 - 48.

 

Mertens D R, and Loften J R 1980 The effect of starch on forage fiber digestion kinetics in vitro. Journal of Dairy Science. 63: 1437 - 1446.

 

Noguera R R, Saliba E O y Mauricio R M 2004 Comparación de modelos matemáticos para estimar los parámetros de degradación obtenidos a través de la técnica de producción de gas. Livestock Research for Rural Development. Vol. 16, Art.#86 Retrieved October 17, 2004 from http://www.cipav.org.co/lrrd/lrrd16/11/nogu16086.htm

 

NRC - National Research Council. 1996 Nutrients requeriments of beef cattle. Washington, DC: National Academy of  Sciences, 7^th revised Edition 359 p.

 

Pell A N, Doane P H and Schofield P 1997 In vitro digestibility and gas production. In: Simpósio sobre Tópicos Especiais em Zootecnia, Lavras, MG, p.109 - 132.

 

Pell A N and Schofield P 1993 Computerized monitoring of gas production to measure forage digestion in vitro. Journal of Dairy Science. 76: 1063 - 1073.

 

Pivonka E J and Firkins J L 1993 Effect of glucose on fiber digestion and particle-associated carboxymethylcellulase activity in vitro. Journal of Dairy Science.76: 129- 141.

 

SAS Institute 1985 SAS User's Guide: Statistics. SAS Institute, INC., Cary. North Carolina, 356p.

 

Schofield P 2000 Gas production methods. In: Farm Animal Metabolism and Nutrition. Wallingford (UK). CAB International. 450 p.

 

Schofield P and Pell A N 1995a Measurement and kinetic analysis of the neutral detergent soluble carbohydrate fraction of legumes and grasses. Journal of Animal Science.73: 3455 - 3463.

 

Schofield P and Pell A N 1995b Validity of using accumulated gas pressure readings to measure forage digestion in vitro: a comparision involving three forages. Journal of Dairy Science.78: 2230 - 2238.

 

Sniffen C J, O´Connor J D, Van Soest P J, Fox D G and Russell J B 1992 A net carbohydrate and protein system for evaluation cattle diets: II. Carbohydrate and protein availability. Journal of Animal Science. 70: 3562 - 3577.

 

Stefanon B, Pell A N and Schofield P 1996 Effect of maturity on digestion kinetics of water-soluble and water-insoluble fractions of alfalfa and brome hay. Journal of Animal Science. 74: 1104 - 1115.

 

Theodorou M K, Williams B A, Dhanoa M S, McAllan A B and France J 1994 A new gas production method using a pressure transducer to determine the fermentation kinetics of ruminal feeds. Animal Feed Science and Technology. 48: 185 - 197.

 

Van Soest  P J 1994 Nutritional Ecology of the ruminant. Ithaca, Cornell University, 476p.

 

Van Soest P J, Robertson J B and Lewis B A 1991 Methods for dietary fiber, neutral detergent, and nonstarch polysaccharides in relation to animal nutrition. Journal of Dairy Science. 74: 3583 - 3597